■ 产品描述

人CD34+细胞富集试剂盒是通过阴性分选法从人细胞样本中富集 CD34+细胞。原理是利用生物素（biotin）标记的单克隆抗体对非目标细胞（非CD34+细胞）进行标记，然后通过链霉亲和素（streptavidin）标记的磁珠对非目标细胞进行清除，从而达到富集 CD34+细胞的目的。分选过程需要用到磁力架。

■ 产品组分

■ 储存条件

2-8°C保存，不可冷冻，有效期见试管标签。

■ 适用范围

本试剂盒适用于从人脐带血单个核细胞（CBMC）或外周血单个核细胞（PBMC）中富集CD34+细胞。

■ 操作流程

1.制备人CBMC或PBMC：利用 Ficoll 密度梯度离心法从人脐带血或外周血中分离单个核细胞，以 PBS 洗涤细胞，离心后将CBMC或PBMC重悬于分选 buffer中，调整细胞密度为 1×10^8 cells/mL。

注意：分选buffer为含有2% FBS和2mM EDTA的PBS ，缓冲液应该不含Ca2+和Mg2+ ，需预先通过0.22 μm滤膜过滤除菌。

2. 抗体标记非目的细胞：：将100 μL细胞悬液（1×10^7个细胞）加入5 mL无菌流式管底部，加2 μL Biotin-Antibody Mix，轻轻吹打混匀，4℃孵育10 分钟。

注意：加入细胞悬液时将细胞加入流式管底部，避免沿流式管管壁加入；流式管选用聚苯乙烯材质；根据所使用磁力架特点也可使用离心管进行细胞分选；说明书以1×10^7个细胞量举例，如果分选更多细胞，则按比例调整用量：如5×10⁷ cells需500 μL细胞悬液 + 10 μL抗体。

3. 磁珠预处理：涡旋震荡重悬磁珠（Streptavidin-beads），吸取20 μL磁珠至1.5 mL离心管，加入1 mL分选buffer，10000 g离心1 min，弃上清。重复洗涤1次。清洗后用20 μL分选buffer进行重悬。

注意：buffer与磁珠最终是1:1等比例混匀，如清洗50 μL磁珠（Streptavidin-beads），则最终用50 μL buffer重悬。

4. 磁珠孵育：加入20 μL预处理过的Streptavidin-beads混悬液，轻轻混匀，4℃孵育10分钟。

注意：说明书以1×10^7个细胞量举例，如果分选更多细胞，则按比例增加Streptavidin-beads用量。

5. 磁力分离：孵育完成后，加入2.5 mL分选buffer，充分混匀，将流式管置于磁力架上静置5分钟。

注意：补buffer时用移液器上下混合吹打5次混匀，避免剧烈振荡或者上下颠倒混匀。

6. 收集细胞 ：手持磁力架，将细胞悬液轻柔倒入无菌离心管中，此细胞悬液中即包含富集的人CD34+细胞。

注意：倾倒过程中流式管不要脱离磁力架。

7.二次富集（可选*）：将收集的细胞悬液离心，300 g离心5 min后，弃上清，收集细胞。重复步骤2-6，此操作可进一步提高 CD34+细胞的富集效果。

■ 注意事项

1.磁珠和抗体混合液使用和保存过程中均应避免冷冻、高速离心等操作；

2.建议选用低吸附移液器吸头和离心管，避免因吸附造成磁珠和抗体的损耗；

3.如果单次分选少于1×10^7 cells，则将细胞悬液体积补至100 μL ，加入2 μL Biotin-Antibody Mix和20 μL Streptavidin-Beads；

4.本产品需与磁性分离器配套使用；

5.本产品仅供研究使用。

■ 分选效果

从人 CBMC 中富集CD34+细胞，分选前后的细胞用 FITC anti-human CD45（克隆号 HI30）和 PE anti-human CD34 抗体（克隆号 581）标记后进行流式细胞仪分析。分选前CD34+细胞的纯度为 1.2%，第一次分选后CD34+细胞的纯度为 13.9%，第二次分选后 CD34+细胞的纯度为33.8%。